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目前已知寄生于猫血中的支原体有三种：猫血支原体（Mycoplasma haemofelis），Candidatus Mycoplasma haemominutum和Candidatus Mycoplasma turicensis。在PCR技术出现之前，这三种支原体被统称为猫血巴尔通氏体(Hemobartonella felis)，后重新归类为支原体属。有报道大约15%的猫为带菌者。Candidatus Mycoplasma haemominutum寄生于猫红细胞表面，在上述三种支原体中致病能力最弱，常不显现症状，根据不同的报道，其感染比例在9.6-66.6%，在上述三种支原体中阳性率最高，且常有混合感染。

常用的检测方法包括显微镜镜检法和PCR法。镜检法灵敏度低，实验误差大，无法区分支原体种类，易受血液中其他物质以及人工涂片方法的干扰，且支原体易从红细胞表面脱落，造成漏检，在慢性发作时可能无法检测到。而PCR法在灵敏度上则有明显的优势，且可以区分支原体种类。定量PCR法与普通PCR法相比，不仅可以精确定量，而且操作更为方便，更少受环境污染的影响。

本试剂盒针对16S rRNA基因的保守区域设计特异性引物，可准确识别Candidatus Mycoplasma haemominutum，与其他生物的基因组无交叉反应。对320个猫血样进行检测，获得133个阳性，其中47个为多重感染。对扩增产物进行测序，证实为Candidatus Mycoplasma haemominutum特异性扩增。

本试剂盒包含热启动Taq酶、dNTP（以UTP代替了TTP）、引物、阳性对照品、SYBR Green I染料、ROX染料，和用以防止残余DNA污染的UDG（尿嘧啶-N-糖苷酶），用户只需准备好DNA样品即可使用。

热启动Taq酶结合了特异性单克隆抗体的DNA聚合酶，在室温下聚合酶活性被抗体抑制。在PCR循环的变性阶段，抗体受热被去除，聚合酶活性恢复，因此获得“热启动”功能，可减少残余DNA的污染，提高PCR扩增效率、灵敏度和目的片段产量。

SYBR Green I可以与DNA双链的小沟结合，结合后在497nm激发光照射下产生520nm的发射光。未结合双链DNA的SYBR Green I基本不产生荧光。因此可以根据荧光值的大小判断溶液内DNA双链的多寡，用于实时检测PCR反应过程中产物的累积量。初始模板浓度越高，反应循环数越高，则双链DNA含量越高，荧光值也就越高。值得注意的是，SYBR Green I也可以结合非特异性PCR产物以及引物二聚体，此时产生的荧光与目标扩增产物无法区分。为了判断荧光信号是否来自目标扩增产物，可以绘制熔解曲线。通过逐步缓慢升温，使双链DNA解离为单链DNA，同时检测荧光值的变化，绘制曲线，根据荧光值观察DNA解链的温度。本试剂盒目标扩增产物的Tm值在81-86度范围内。

UDG和dUTP可以阻止前次步骤残余DNA的扩增。dUTP可以确保扩增后的DNA中均含有尿嘧啶。UDG可从单链或双链DNA上去除尿嘧啶残基，从而阻止含有尿嘧啶的DNA作为下几轮PCR的模板。在PCR循环开始前的UDG孵育步骤，可以破坏带有尿嘧啶的PCR产物。经过该去除污染步骤后，UDG在正常的PCR循环过程中被高温灭活，对PCR反应没有影响。

ROX不参与PCR反应，在PCR反应过程中荧光没有变化，可以提供一条基线用于校正加样误差和管间差异，便于仪器自动分析报告荧光与内参ROX荧光的比值，使定量更准确。ROX染料的激发波长为584nm，发射波长为612nm。用ROX进行校正后可以使实验误差减小十倍左右。