绵羊肺炎支原体(*Mycoplasma ovipneumoniae*, Mo)是中国绵羊支原体性肺炎的主要病原体,对养羊业构成重大威胁。本研究从甘肃省九个养殖场的患病湖羊鼻拭子样本中分离出18株Mo。选取了9个代表性菌株进行全基因组测序(Whole-genome sequencing, WGS)和分析,以探索分离株与来自不同地区和宿主的参考菌株之间的遗传关系。基于培养特性和地区菌株间的遗传变异性,选择GSWW364菌株进行后续实验。研究人员使用剂量为1×107颜色改变单位(color change units, CCU)的GSWW364菌株对100只健康的2月龄湖羊进行了实验性攻毒。54只羊表现出典型的临床症状,包括体温升高、咳嗽和肺部病变,证实了GSWW364的致病性。组织和细胞水平的转录组学分析揭示了三个与感染相关的差异表达基因(differentially expressed genes, DEGs):*HIF1A*、*SLC2A3*和*SLC38A1*。验证实验证实这些基因在患病肺组织中表达显著上调。在绵羊肺泡上皮II型(sheep alveolar epithelial type II, SAT II)细胞中敲低这些基因显著降低了Mo的粘附率。这些发现表明,这些基因可能在感染过程中通过调节缺氧响应和代谢途径来促进病原体粘附和炎症反应。总之,本研究为绵羊支原体性肺炎的防控提供了科学依据,并为深入研究该疾病的病理机制奠定了基础,同时也为疫苗开发和抗病育种计划提供了有价值的见解。
**研究背景与意义**
绵羊支原体性肺炎是一种慢性呼吸道疾病,以间质性和增生性病变为特征,临床表现为咳嗽、呼吸困难、发热和体重减轻等症状。该病分布广泛,会导致宿主免疫力受损、继发感染易感性增加,给养羊生产系统造成重大经济损失。绵羊肺炎支原体(*Mycoplasma ovipneumoniae*, Mo)是其主要病原体,在中国多个地区均有报道。湖羊作为中国重要的商业肉用品种,具有高生产力和早熟性,在羊肉生产系统中广泛应用。现场观察表明,支原体性肺炎给该品种造成了巨大的经济损失,且个体间对感染的易感性存在显著差异,提示宿主遗传因素可能在其中发挥作用。因此,阐明Mo的遗传特征对于理解其致病性和流行病学至关重要,而识别影响易感性的宿主基因对于解析疾病机制和制定针对性干预措施也具有重要意义。
**研究方法概述**
本研究结合了病原分离、全基因组测序和多层次转录组学分析。首先,从甘肃省九个养殖场的患病湖羊中分离出18株疑似Mo菌株,并通过培养特性、吉姆萨染色、扫描电镜和16S rRNA基因PCR进行鉴定。选取其中9株代表性分离株进行全基因组测序,并与从NCBI数据库下载的168株Mo基因组(包括绵羊源和山羊源谱系)进行比对和系统发育分析。基于培养特征和遗传变异性,选择GSWW364菌株进行动物实验。研究使用100只健康的2月龄未免疫Mo疫苗的湖羊进行攻毒实验,通过连续3天滴鼻和气管注射方式进行感染,并设立假感染组作为对照。通过监测体温、咳嗽频率、抗体水平、肺部病变和细菌载量等指标,将动物分为易感组和耐受组。为探究宿主反应,研究人员分别对易感组和耐受组的肺组织样本,以及在体外用GSWW364感染(感染复数MOI为100,2小时)与未感染的绵羊肺泡上皮II型细胞样本进行了转录组测序。通过差异表达基因筛选、基因本体论(Gene Ontology, GO)功能富集分析和京都基因与基因组百科全书(Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes, KEGG)通路富集分析,整合组织和细胞水平的转录组数据,筛选出关键候选基因。随后通过实时定量PCR(quantitative polymerase chain reaction, qPCR)在100只羊的肺组织中进行表达验证,并在SAT II细胞中通过小干扰RNA(small interfering RNA, siRNA)敲低技术验证候选基因对Mo粘附的影响。
**研究结果**
**1. 临床分离株的分离与鉴定**
从甘肃省不同养殖场的患病绵羊中分离出18株疑似Mo菌株。这些菌株在含酚红的液体培养基中生长导致培养基由红变黄,吉姆萨染色显示蓝紫色细菌细胞,扫描电镜显示明显的多形性。16S rRNA基因PCR扩增均产生一致的361 bp目标条带,测序和同源性比对确认所有分离株均为Mo。
**2. 分离株的全基因组测序与分析**
对9株来自不同养殖场的Mo分离株进行WGS,数据量超过6 Gbp,与Mo参考基因组Y98的比对率约为95%。系统发育树分析显示,绵羊源分离株聚集在簇1和簇2,而山羊源分离株位于簇3和簇4,表明不同宿主来源的Mo菌株存在显著差异。主成分分析(principal component analysis, PCA)和t分布随机邻域嵌入(t-distributed stochastic neighbor embedding, t-SNE)降维分析进一步验证了基于全基因组变异的菌株聚类结果。值得注意的是,本研究分离的GSWW364菌株在系统发育上与高致病性Mo菌株NJ01关系密切,而与参考菌株Y98在遗传位点、局部序列和基因组结构上存在差异,提示GSWW364可能是一个高毒力菌株,值得进一步研究其致病性。
**3. 绵羊感染Mo GSWW364菌株的易感性与病理学**
攻毒实验后,100只实验羊中有54只出现典型的支原体性肺炎临床症状(易感组),46只未出现明显临床症状(耐受组)。结果显示,易感组攻毒后体温显著升高,咳嗽频率明显高于耐受组和假感染组,体重增长更慢。剖检发现易感组肺部出现典型肝样变,病变区域比例显著更高,淋巴结肿大。此外,易感组肺组织中的细菌载量显著高于耐受组。血清学酶联免疫吸附测定(enzyme-linked immunosorbent assay, ELISA)显示,易感组的Mo特异性抗体水平持续升高,而耐受组抗体水平达到峰值后逐渐恢复正常。组织病理学检查显示,易感组肺泡结构严重破坏并伴有广泛的炎性细胞浸润,而耐受组和假感染组的肺泡结构完整、形态正常。这些结果证实Mo GSWW364是一个具有明确毒力的致病菌株,但其致病效应在不同宿主个体间存在显著差异,这种变异性可能与宿主特异性差异有关。
**4. 绵羊响应支原体性肺炎的转录组测序分析**
对易感组和耐受组的肺组织进行转录组测序分析。GO功能富集分析表明,在组织水平,Mo感染通过细胞间相互作用、细胞外微环境调节和膜运输触发致病性感染反应。KEGG富集分析发现,Mo感染在组织水平显著激活了与炎症和免疫相关的信号通路,包括细胞因子-细胞因子受体相互作用、吞噬体和补体与凝血级联反应。在细胞水平,对SAT II细胞的转录组分析显示,Mo感染诱导了细胞内分子修饰、细胞器功能激活和相关转录调控程序的启动。KEGG富集分析发现,除了丝裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase, MAPK)和晚期糖基化终末产物及其受体(advanced glycation end-products and their receptor, AGE-RAGE)等炎症信号通路外,内质网中的蛋白质加工等关键通路也显著富集。综上所述,Mo感染可在组织和细胞水平同时引发炎症反应,组织水平涉及多细胞网络和微环境,而细胞水平则侧重于细胞内调控,共同揭示了Mo感染诱导的整体宿主反应机制。
**5. 与Mo感染相关的关键基因的转录组学鉴定与验证**
对两组转录组测序结果的进一步分析显示,组织水平转录组在易感组和耐受组之间共有3361个DEGs,细胞水平在感染与未感染组之间共有4532个DEGs。两个转录组数据集共鉴定出187个共同的DEGs。研究人员选择了其中表达上调最显著且共同的基因进行进一步验证,最终选定缺氧诱导因子1α(hypoxia-inducible factor 1 alpha, *HIF1A*)、溶质载体家族2成员3(solute carrier family 2 member 3, *SLC2A3*)和溶质载体家族38成员1(solute carrier family 38 member 1, *SLC38A1*)。首先在具有不同Mo感染临床表现的绵羊肺组织中验证了这三个靶基因的表达水平,结果显示与转录组数据一致,这三个基因的转录水平在易感组绵羊肺组织中显著高于耐受组。随后在SAT II细胞中进行了初步功能验证,敲低*HIF1A*、*SLC2A3*和*SLC38A1*后,降低了它们的转录水平,进一步的Mo粘附实验证实,当这些基因的转录水平降低时,Mo对SAT II细胞的粘附率显著降低。这些发现表明这三个基因确实与Mo感染密切相关。
**讨论与结论**
本研究分离并鉴定了18株Mo菌株,并对9株代表性分离株进行了全基因组测序,揭示了不同宿主来源菌株之间存在显著的遗传分化。值得注意的是,GSWW364菌株与高毒力菌株NJ01在系统发育上关系密切,而与参考菌株Y98存在明显差异。综合转录组分析鉴定出*HIF1A*、*SLC2A3*和*SLC38A1*作为可能参与Mo感染易感性和疾病进程的候选宿主因子。已有证据表明,*HIF1A*、*SLC2A3*和*SLC38A1*在气道炎症中构成一个协调的调控轴。由*HIF1A*编码的缺氧诱导因子-1α(HIF-1α)是细胞适应缺氧的关键转录因子,在氧稳态中起核心作用。它能调节氧感应、葡萄糖转运、氨基酸代谢和血管生成等过程,并通过激活核因子κB(nuclear factor-kappa B, NF-κB)信号通路加剧肺损伤,从而促进中性粒细胞浸润和促炎细胞因子的产生。*SLC2A3*编码葡萄糖转运蛋白3(glucose transporter 3, GLUT3),是HIF-1α的直接转录靶标。*SLC38A1*编码氨基酸转运蛋白钠耦合中性氨基酸转运蛋白1(sodium-coupled neutral amino acid transporter 1, SNAT1),是一个由HIF-1α诱导的缺氧响应基因。本研究首次在绵羊支原体性肺炎的背景下研究了这些基因。初步数据表明,与耐受动物相比,*HIF1A*、*SLC2A3*和*SLC38A1*在易感动物的肺组织中显著上调。在细胞水平,敲低每个基因都会降低Mo对SAT II细胞的粘附。基于这些发现和现有文献,研究人员提出*HIF1A*可能转录激活*SLC2A3*和*SLC38A1*,并与它们协同作用调节病理微环境,从而影响疾病进程。总之,这些发现为宿主-病原体相互作用提供了新的见解,并为未来研究阐明绵羊支原体性肺炎的分子机制和改进疾病控制策略奠定了基础。